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當(dāng)前位置:首頁  >  技術(shù)文章  >  綿羊誘導(dǎo)多能干細胞電穿孔轉(zhuǎn)染條件優(yōu)化研究

綿羊誘導(dǎo)多能干細胞電穿孔轉(zhuǎn)染條件優(yōu)化研究

更新時間:2025-03-05      點擊次數(shù):202

摘要

優(yōu)化綿羊誘導(dǎo)多能干細胞(iPSC)的電穿孔轉(zhuǎn)染效率。通過系統(tǒng)調(diào)整電壓、脈沖時間及質(zhì)粒濃度,結(jié)合威尼德電穿孔儀的參數(shù)設(shè)置,篩選出轉(zhuǎn)染效率與細胞存活率的組合。實驗結(jié)果顯示,電壓300 V、脈沖時長5 ms、質(zhì)粒濃度2 μg/μL時,轉(zhuǎn)染效率達68.2%,細胞存活率>80%。本方案為綿羊iPSC基因編輯研究提供了可靠的技術(shù)支持。

引言

綿羊誘導(dǎo)多能干細胞在畜牧育種、疾病模型構(gòu)建及轉(zhuǎn)基因動物開發(fā)中具有重要應(yīng)用價值。然而,其轉(zhuǎn)染效率受限于細胞膜通透性低及傳統(tǒng)轉(zhuǎn)染方法(如脂質(zhì)體)的毒性問題。電穿孔技術(shù)通過瞬時電脈沖形成膜孔道,可高效遞送外源基因,但參數(shù)設(shè)置需根據(jù)細胞類型精準(zhǔn)優(yōu)化。
本研究針對綿羊iPSC特性,采用威尼德電穿孔儀,探究電壓、脈沖時間及質(zhì)粒濃度對轉(zhuǎn)染效率的影響,建立標(biāo)準(zhǔn)化操作流程,以期為后續(xù)基因功能研究提供技術(shù)基礎(chǔ)。

實驗部分

1. 材料與儀器

細胞來源:綿羊耳緣成纖維細胞重編程獲得的iPSC系,培養(yǎng)于含某試劑(基礎(chǔ)培養(yǎng)基)的體系中。

 

質(zhì)粒構(gòu)建:攜帶綠色熒光蛋白(GFP)及嘌呤霉素抗性基因的pCXLE載體。

 

核心儀器:威尼德電穿孔儀、威尼德紫外交聯(lián)儀、倒置熒光顯微鏡(某品牌)。

2. 實驗方法

2.1 細胞培養(yǎng)與預(yù)處理

iPSC以某試劑(含10%胎牛血清的DMEM/F12培養(yǎng)基)培養(yǎng),傳代至對數(shù)生長期后,用0.25%胰酶消化制備單細胞懸液(密度1×10^6 cells/mL),預(yù)冷至4℃?zhèn)溆谩?/span>

2.2 電穿孔參數(shù)設(shè)計

采用三因素三水平正交實驗:

電壓梯度250 V、300 V、350 V

 

脈沖時間3 ms、5 ms、7 ms

 

質(zhì)粒濃度1 μg/μL、2 μg/μL、3 μg/μL

每組重復(fù)3次,轉(zhuǎn)染后細胞接種于24孔板,37℃、5% CO?條件下恢復(fù)培養(yǎng)24 h。

2.3 轉(zhuǎn)染效率檢測

熒光顯微鏡觀察:威尼德紫外交聯(lián)儀固定細胞后,通過GFP陽性細胞比例計算轉(zhuǎn)染效率。

 

流式細胞術(shù):收集細胞懸液,某試劑(PI染色液)標(biāo)記死細胞,分析存活率。

2.4 數(shù)據(jù)統(tǒng)計

采用某軟件(SPSS 26.0)進行方差分析,顯著性水平設(shè)為P<0.05。

結(jié)果與討論

1. 電壓對轉(zhuǎn)染效率的影響

電壓300 V時,轉(zhuǎn)染效率達峰值(68.2%±3.1%),顯著高于250 V(45.7%±2.8%)與350 V(52.4%±4.2%)。高電壓(350 V)雖增加膜通透性,但導(dǎo)致細胞存活率下降至62.5%(P<0.01),提示電壓需平衡轉(zhuǎn)染效率與細胞活性。

2. 脈沖時間與質(zhì)粒濃度的協(xié)同效應(yīng)

脈沖時間5 ms時,質(zhì)粒濃度2 μg/μL的組合可顯著提高DNA導(dǎo)入量(熒光強度較1 μg/μL組提升1.8倍),而濃度超過3 μg/μL則引發(fā)細胞毒性(存活率<70%)。威尼德電穿孔儀的多脈沖模式(2次間隔100 ms)進一步降低熱損傷風(fēng)險。

3. 正交實驗優(yōu)化結(jié)果

綜合極差分析表明,電壓為關(guān)鍵影響因素(貢獻率42.3%),其次為質(zhì)粒濃度(31.5%)與脈沖時間(26.2%)。參數(shù)組合(300 V、5 ms、2 μg/μL)下,轉(zhuǎn)染效率與存活率均顯著優(yōu)于常規(guī)方案(P<0.05)。

結(jié)論

本研究成功建立了適用于綿羊iPSC的高效電穿孔轉(zhuǎn)染體系,證實威尼德電穿孔儀可通過參數(shù)精細化調(diào)控實現(xiàn)基因遞送效率與細胞活性的雙重優(yōu)化。該方案為綿羊干細胞基因編輯及功能研究提供了重要技術(shù)支撐。

技術(shù)細節(jié)補充

電穿孔緩沖液:采用某試劑(低電導(dǎo)率緩沖液),減少電流熱效應(yīng)。

 

質(zhì)粒純度要求A260/A280比值1.8-2.0,威尼德分子雜交儀驗證無蛋白殘留。

 

質(zhì)量控制:每批次實驗前使用標(biāo)準(zhǔn)質(zhì)粒進行儀器校準(zhǔn),確保參數(shù)穩(wěn)定性。

參考文獻

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